Kit FD Rapid GolgiStain™ (Pequeño)
La impregnación de Golgi-Cox¹˒² ha sido una de las técnicas más eficaces para estudiar tanto la morfología normal como las alteraciones morfológicas de las neuronas y las células gliales. Mediante la técnica de Golgi, se han identificado cambios morfológicos sutiles en las dendritas neuronales y las espinas dendríticas tanto en cerebros de animales tratados con fármacos como en cerebros post mortem de pacientes con enfermedades neurológicas³˒⁴. Sin embargo, la falta de fiabilidad y el largo tiempo requerido por la tinción de Golgi tradicional han sido importantes obstáculos para la aplicación generalizada de esta técnica.
El FD Rapid GolgiStain™ Kit está diseñado basándose en los principios de los métodos descritos por Ramón-Moliner², Glaser y Van der Loos⁵. Este kit no solo ha mejorado y simplificado considerablemente la técnica de Golgi-Cox, sino que también ha demostrado ser extremadamente fiable y sensible para visualizar los detalles morfológicos de las neuronas y las células gliales, especialmente las espinas dendríticas. El FD Rapid GolgiStain™ Kit ha sido ampliamente probado y utilizado en tejido cerebral de diversas especies animales, así como en muestras de cerebro humano post mortem.
Con la confianza de investigadores en neurociencia durante casi 30 años, el FD Rapid GolgiStain™ Kit ha sido citado en más de 1.500 publicaciones revisadas por pares en todo el mundo.
Explore estudios revisados por pares en los que se ha utilizado el FD Rapid GolgiStain™ Kit.
Información del producto
Número de catálogo Tamaño Documentación Asistencia técnica PK401A Para hasta 25 cerebros de ratón
Instructional video for FD Rapid GolgiStain Kit
Contenido del kit
Conservar a temperatura ambiente.
Solución A 125 ml Solución B 125 ml Solución C 125 ml x 2 Solución D 125 ml Solución E 125 ml Recuperador de muestras de vidrio 2 Pincel de pelo natural 2 Frasco que gotea 1 Manual de usuario 1 Materiales necesarios pero no incluidos
Agua bidestilada o desionizada.
Tubos o viales de plástico o vidrio.
Materiales y equipos histológicos, incluyendo portaobjetos recubiertos de gelatina, cubreobjetos, frascos para tinción, etanol, xileno o sustitutos del xileno, medio de montaje resinoso (por ejemplo, Permount®) y un microscopio óptico.
Referencias
- Corsi P. (1987) El enfoque morfológico de Camillo Golgi a la neuroanatomía. En Masland RL, Portera-Sanchez A y Toffano G (eds.), Neuroplasticidad: una nueva herramienta terapéutica en la patología del SNC, pp 1-7. Berlín: Springer.
- Ramón-Moliner E. (1970) La técnica de Golgi-Cox. En Nauta WJH y Ebbesson SOE (eds.), Métodos contemporáneos en neuroanatomía. pp 32-55, Nueva York: Springer.
- Graveland GA, Williams RS y DiFiglia M. (1985) Evidencia de cambios degenerativos y regenerativos en neuronas espinosas neoestriatales en la enfermedad de Huntington. Science. 227:770-3.
- Robinson TE y Kolb B. (1997) Modificación estructural persistente en neuronas del núcleo accumbens y la corteza prefrontal producida por la experiencia previa con anfetamina. J. Neurosci. 17:8491-7.
- Glaser ME y Van der Loos H. (1981) Análisis de secciones gruesas de cerebro mediante microscopía computarizada anverso-reverso: aplicación de una nueva tinción de Golgi-Nissl de alta claridad. J. Neurosci. Meth. 4:117-25.
