FD Rapid GolgiStain™ Kit (Klein)
Die Golgi-Cox-Imprägnierung¹˒² zählt zu den effektivsten Techniken zur Untersuchung sowohl der normalen als auch der pathologisch veränderten Morphologie von Neuronen und Gliazellen. Mithilfe der Golgi-Technik konnten subtile morphologische Veränderungen an neuronalen Dendriten und dendritischen Dornen sowohl im Gehirn medikamentös behandelter Tiere als auch in postmortalen Gehirnproben von Patienten mit neurologischen Erkrankungen nachgewiesen werden³˒⁴. Die mangelnde Zuverlässigkeit und der zeitaufwendige Ablauf der herkömmlichen Golgi-Färbung stellten jedoch lange Zeit wesentliche Hindernisse für die breite Anwendung dieser Technik dar.
Das FD Rapid GolgiStain™ Kit basiert auf den Prinzipien der von Ramón-Moliner² sowie Glaser und Van der Loos⁵ beschriebenen Methoden. Das Kit hat die Golgi-Cox-Technik nicht nur erheblich verbessert und vereinfacht, sondern sich auch als äußerst zuverlässig und sensitiv für die Darstellung morphologischer Details von Neuronen und Gliazellen erwiesen, insbesondere von dendritischen Dornen. Das FD Rapid GolgiStain™ Kit wurde umfassend getestet und findet breite Anwendung bei Gehirngewebe verschiedener Tierarten sowie bei postmortalen menschlichen Gehirnproben.
Seit nahezu 30 Jahren genießt das FD Rapid GolgiStain™ Kit das Vertrauen von Neurowissenschaftlern und wurde weltweit in mehr als 1.500 peer-reviewten Publikationen zitiert.
Entdecken Sie peer-reviewte Studien, in denen das FD Rapid GolgiStain™ Kit verwendet wurde.
Produktinformationen
Katalognummer Größe Dokumentationen Technische Unterstützung PK401A Für bis zu 25 Mäusehirne
Instructional video for FD Rapid GolgiStain Kit
Inhalt des Sets
Bei Raumtemperatur lagern.
Lösung A 125 ml Lösung B 125 ml Lösung C 125 ml x 2 Lösung D 125 ml Lösung E 125 ml Glasprobenentnahmegerät 2 Pinsel aus Naturhaar 2 Flasche fallen lassen 1 Benutzerhandbuch 1 Benötigte, aber nicht enthaltene Materialien
Doppelt destilliertes oder deionisiertes Wasser.
Kunststoff- oder Glasröhrchen oder -ampullen.
Histologische Verbrauchsmaterialien und Geräte, darunter mit Gelatine beschichtete Objektträger, Deckgläser, Färbegefäße, Ethanol, Xylol oder Xylolersatzstoffe, ein harzartiges Eindeckmedium (z. B. Permount®) und ein Lichtmikroskop.
Referenzen
- Corsi P. (1987) Camillo Golgis morphologischer Ansatz zur Neuroanatomie. In: Masland RL, Portera-Sanchez A und Toffano G (Hrsg.), Neuroplastizität: ein neues therapeutisches Instrument in der ZNS-Pathologie, S. 1–7. Berlin: Springer.
- Ramón-Moliner E. (1970) Die Golgi-Cox-Technik. In: Nauta WJH und Ebbesson SOE (Hrsg.), Zeitgenössische Methoden der Neuroanatomie. S. 32–55, New York: Springer.
- Graveland GA, Williams RS und DiFiglia M. (1985) Hinweise auf degenerative und regenerative Veränderungen an den stacheligen Neuronen des Neostriatums bei der Huntington-Krankheit. Science. 227:770-3.
- Robinson TE und Kolb B. (1997) Persistente strukturelle Veränderungen in Neuronen des Nucleus accumbens und des präfrontalen Cortex nach vorheriger Amphetamin-Exposition. J. Neurosci. 17:8491-7.
- Glaser ME und Van der Loos H. (1981) Analyse dicker Hirnschnitte mittels Vorder- und Rückseiten-Computermikroskopie: Anwendung einer neuen, hochtransparenten Golgi-Nissl-Färbung. J. Neurosci. Meth. 4:117-25.
